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Multiômica espacialmente resolvida de nichos cardíacos humanos

Jul 10, 2023Jul 10, 2023

Nature volume 619, páginas 801–810 (2023)Cite este artigo

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A função de uma célula é definida por suas características intrínsecas e seu nicho: o microambiente tecidual em que ela reside. Aqui combinamos dados de transcriptômica unicelular e espacial para descobrir nichos celulares em oito regiões do coração humano. Mapeamos células para locais microanatômicos e integramos anotações estruturais baseadas em conhecimento e não supervisionadas. Também traçamos o perfil das células do sistema de condução cardíaca humano1. Os resultados revelaram seu repertório distinto de canais iônicos, receptores acoplados à proteína G (GPCRs) e redes reguladoras, e implicaram o FOXP2 no fenótipo do marcapasso. Mostramos que o nó sinoatrial é compartimentado, com um núcleo de células marca-passo, fibroblastos e células gliais que suportam a sinalização glutamatérgica. Usando um módulo CellPhoneDB.org personalizado, identificamos interações de células marca-passo trans-sinápticas com a glia. Introduzimos uma ferramenta de predição de alvos drogados, drug2cell, que aproveita perfis unicelulares e interações medicamento-alvo para fornecer insights mecanísticos sobre os efeitos cronotrópicos dos medicamentos, incluindo análogos do GLP-1. No epicárdio, mostramos o enriquecimento de células plasmáticas IgG+ e IgA+ formando nichos imunológicos que podem contribuir para a defesa contra infecções. No geral, fornecemos uma nova clareza à eletroanatomia e imunologia cardíaca, e nosso conjunto de abordagens computacionais pode ser aplicado a outros tecidos e órgãos.

O coração é composto por tecidos distintos que contêm nichos de tipos de células especializadas que conferem funcionalidade específica do local. O sequenciamento de RNA unicelular (scRNA-seq) e o sequenciamento de RNA de núcleo único (snRNA-seq) oferecem uma estrutura poderosa e imparcial para caracterizar essas células2,3. A adição de transcriptômica espacialmente resolvida nos permite restaurar informações estruturais perdidas em técnicas unicelulares e obter informações sobre a função coletiva .

O sistema de condução cardíaca (SCC), responsável pela ativação elétrica regular e coordenada do coração, contém estruturas que incluem os nodos sinoatrial e atrioventricular (SAN e AVN, respectivamente), o feixe atrioventricular (BAV) e a rede His-Purkinje, que cada um abriga células com propriedades eletrofisiológicas distintas6. Combinamos dissecação direcionada e histologia para gerar perfis transcriptômicos completos de células CCS humanas. Além disso, usamos a transcriptômica espacial para mapear essas células em suas localizações microanatômicas e descobrir suas células parceiras de nicho. Inspirados no amplo perfil de expressão de receptores de células marca-passo (células P), estendemos o banco de dados de interação célula-célula CellPhoneDB7 com um novo módulo neural-GPCR. Este módulo destaca conexões sinápticas, incluindo novos insights sobre células gliais vizinhas e capacidade de sinalização glutamatérgica.

A atividade fora do alvo das terapias não cardíacas no coração e no seu sistema de condução é uma das principais razões para o fracasso e a retirada do desenvolvimento de medicamentos8. Para ajudar a enfrentar esse desafio, desenvolvemos um pipeline, drug2cell, que integra interações medicamento-alvo do banco de dados ChEMBL com dados unicelulares fornecidos pelo usuário para avaliar de forma abrangente a expressão medicamento-alvo em células individuais. A aplicação desta abordagem às células P fornece uma visão mecanicista dos efeitos cronotrópicos dos medicamentos não cardíacos.

Finalmente, mostramos que nossa abordagem multiômica integrada é capaz de descobrir nichos (isto é, microambientes de tecidos celulares). Definimos um sistema de defesa imunológica epicárdico e um nicho de estresse miocárdico ventricular, e inferimos sinalização intercelular específica ativa dentro de cada microambiente celular. Esses novos nichos celulares cardíacos nos permitem refinar os componentes celulares que fundamentam a microanatomia do coração humano.

Integramos conjuntos de dados scRNA-seq e snRNA-seq (sc / snRNA-seq) publicados anteriormente com dados multiome recém-gerados (snRNA-seq emparelhado e ensaio de núcleo único para cromatina acessível por transposase usando sequenciamento (snATAC-seq)) e dados de transcriptômica espacial (10x Genômica). Estudamos oito regiões anatômicas: os ventrículos esquerdo e direito (VE e VD, respectivamente), os átrios esquerdo e direito (AE e AD, respectivamente), o ápice (AX), o septo interventricular (SP), o SAN e o AVN (Fig. 1a). No total, nossos dados incluíram amostras de 25 doadores com idades entre 20 e 75 anos (fig. 1a). Todas as amostras de tecido eram de doadores de transplante sem histórico de doença cardíaca ou arritmia (Tabela Suplementar 1), e os corações que contribuíram para as regiões SAN e AVN eram de doadores com parâmetros de condução normais confirmados por eletrocardiogramas de 12 derivações antes da doação (Tabela Suplementar 1) .

10% of P cells that are not differentially expressed (Extended Data Fig. 8e,f). c. Predicted TF network governing P cell identity. TFs (grey) and their predicted target genes (TGs) are displayed. Interactions inferred from ATAC-seq analysis are highlighted in red. For a complete list of TGs, see Supplementary Table 5. d, Inferred cell–cell (trans-synaptic) interactions between nodal cell states, with ‘receiver’ cells (post-synaptic SAN_P_cells) in red and ‘sender’ (pre-synaptic) cells in blue. LR mean, mean expression levels of the interacting ligand–receptor partners. e, Histological annotations of a SAN Visium section (FFPE) and H&E image of a RAGP. Representative of three hearts. f, Expression of neural genes in the RAGP (Visium–FFPE). g, Schematic representation of interactions in the nodal niche. P cells interact with ECM proteins (secreted by FBs) and NC2_glia_NGF+ cells, forming synapse-like connections through neurexins. NC2_glia_NGF+ cells support glutamatergic signalling and release NGF, which interacts with receptors on autonomic neurons. P cells express receptors for autonomic neurotransmitters, glutamate and angiotensin II (ATII), which is produced locally by NC2_glial_NGF+ cells and FBs. h, Immunofluorescence staining of the SAN with anti-HCN1 (pink) and anti-PLP1 (yellow) antibodies and nuclei (DAPI, blue). Arrowheads indicate colocalization of HCN1 and PLP1. Images from two independent donors (AV14 and AH6) are shown. Illustrations in a,b,d,g were created using BioRender (https://biorender.com)./p> 2, P value < 0.05, corrected using the Benjamini–Hochberg method). Heatmap colours show the values scaled to z-scores for each drug. Categories of drugs are based on the ATC classification. EC, endothelial cell. c, Schematic representation of putative cell targets for chronotropic drugs. Single-cell profiling revealed that P cells express genes encoding targets of chronotropic drugs (yellow circle), indicative of ANS-independent mechanisms, such as in the case of the GLP1 analogues and perampanel. β, β-adrenergic receptor; M2, muscarinic acetylcholine receptor M2. Illustrations in a,c were created using BioRender (https://biorender.com)./p>